PRACTICA: Determinación de la actividad enzimática de la amilasa
INTRODUCCIÓN
Los enzimas son catalizadores de reacciones químicas en
los seres vivos con eficiencia y especialidad
extraordinaria. En el proceso de la reacción que catalizan, éstas aceleran la
aproximación de una reacción a su equilibrio, sin cambiar la posición de ese
equilibrio. Es decir, los enzimas como catalizadores biológicos son tan efectivos
que la mayor parte de las reacciones que ellas catalizan no se efectuarían en
su ausencia dentro de un tiempo razonable sin que se dieran extremos de la
temperatura, presión o pH. Cada
enzima cataliza un solo tipo de reacción, y casi siempre actúa sobre un único
sustrato o sobre un grupo muy reducido de ellos.
En la presente práctica trabajaremos con la enzima
amilasa que actuará sobre su sustrato el almidón, dando como producto la
glucosa.
La α-amilasa es una enzima proteica que se encuentra en la saliva
humana y cataliza la degradación del almidón, que es un polisacárido de reserva
vegetal. El almidón está formado por dos tipos de moléculas: la amilosa y la
amilopectina, ambos polisacáridos de glucosa. La amilosa se conforma por
cadenas lineales de glucosa unidas por enlaces α-C1-C4, mientras que la
amilopectina tiene, además de éstos últimos enlaces, uniones C1 con C6,
formando cadenas ramificadas. La α-amilasa rompe uniones C1-C4, tanto en la
amilasa como en la amilopectina, dejando dextrinas lineales y ramificadas
(oligosacáridos) como productos.
Para medir la actividad
enzimática de la α-amilasa, se usara un test colorimétrico que detecta el
almidón. Para ellos se contara con una solución de iodo/ioduro de potasio
OBJETIVO
Determinar
la actividad enzimática de la amilasa, observando si existe sustrato residual o
producto.
MATERIALES Y MÉTODOS
Para ésta práctica utilizamos solución de almidón
1% pH 6.9, solución de NaCl 0.1 M, HCl 0.05 N, solución yodada, reactivo de
Benedict cualitativo, solución de α-amilasa
al 1%.
1° CUADRO: SISTEMA DE INCUBACION:
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REACTIVOS |
TUBOS DE
ENSAYO |
|
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I A (mL) |
II A (mL) |
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Solución de
almidón bufferado al 1% |
5 |
5 |
|
Cloruro de
sodio 1 M |
1 |
1 |
|
Agua
destilada |
4 |
3 |
|
Colocamos
ambos sistemas de reacción en baño maría a 37°C por 5 minutos. |
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|
α – amilasa |
---- |
1 |
|
Sometemos a
incubación a 37°C por 15 minutos |
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2° CUADRO: EVALUACIÓN DEL SUSTRATO RESIDUAL:
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REACTIVOS |
TUBOS DE
ENSAYO |
|
|
I B (mL) |
II B (mL) |
|
|
HCl 0.05 N |
5 |
5 |
|
De los tubos
I y II de la etapa “A” transferir a: |
0.5 |
0.5 |
|
Solución
yodada |
0.5 |
0.5 |
|
Mezclamos
uniformemente los contenidos de los sistemas de reacción, observar el color
resultante en cada sistema de reacción. |
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3° CUADRO: DETERMINACIÓN DE LOS PRODUCTOS DE LA REACCIÓN:
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REACTIVOS |
TUBOS DE
ENSAYO |
|
|
I C (mL) |
II C (mL) |
|
|
De los tubos I y II de la etapa “A” transferir a: |
1 |
1 |
|
Benedict cualitativo |
5 |
5 |
|
Sometemos los contenidos en los tubos de ensayo a
ebullición por 10 minutos. Al término del tiempo mezclamos uniformemente,
observamos el color de los contenidos en ambos sistemas de la reacción. |
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RESULTADOS
1° CUADRO: TUBO
I A y II A
En el tubo I A y II A se agrega el almidón
(sustrato), el cloruro de sodio y el agua destilada; pero en el tubo II A se va
agregar α-amilasa (enzima).
Con estos dos tubos posteriormente demostraremos si hay producto (glucosa) o
sustrato residual.
2° CUADRO: TUBO
I B y II B
En el tubo I B con ayuda de la solución yodada hay
cambio de color a azul, con esto se demuestra que en el tubo I A no hubo
α-amilasa (enzima) para que actúe con el almidón (sustrato).
En el tubo II B no hay un cambio a azul, osea la
solución yodada se quedó sin reaccionar por esto tiene un color amarillo; esto
demuestra que en el tubo I A hay una enzima que actúa con el sustrato, por lo
tanto va haber producto y no sustrato residual.
3° CUADRO: TUBO
I C y II C
En el tubo I A no hay presencia de enzima por lo
tanto en el tubo I C no se observará producto, y se demuestra con el Benedict cualitativo,
que a elevada temperatura (ebullición) no cambia de color.
En el tubo II A hay un enzima que al actuar con el
sustrato se forma la glucosa (producto), y esto se demuestra con el Benedict
cualitativo, que al ser sometido a ebullición formó un precipitado color rojo
ladrillo.
DISCUSIÓN
En esta práctica usamos: La solución de almidón
bufferado (sustrato) que sirve como amortiguador para evitar los cambios de pH,
Cloruro de sodio da el pH adecuado para la enzima, la α-amilasa es la enzima
que reacciona con su sustrato almidón, y es la que rompe enlaces que sostienen
a la glucosa, el ácido clorhídrico que condiciona el pH, la solución yodada usada para determinar la presencia de almidón y el Benedict
cualitativo usado para identificar azúcares reductores.
Entonces logramos identificar como una enzima actúa
sobre el almidón, y nos ayuda a entender mejor como estas enzimas actúan en
nuestro cuerpo.
Con la presencia de la enzima amilasa, que va a
hidrolizar al almidón rompiendo sus enlaces; en esta práctica comprobamos que
estos enlaces se rompieron y formaron glucosa.
Pudimos identificar cómo en ausencia de amilasa, y
sólo con el almidón se forma el sustrato residual.
CONCLUSIÓN
En la
presente práctica determinamos la actividad enzimática de la amilasa, observando
que en uno de los tubos de la etapa “B” hubo presencia de sustrato residual,
por eso la reacción presentó color azul oscuro; éste sustrato residual se
presenta sólo si en los tubos de la etapa “A” no hay de enzima que actúe con su
sustrato.
Además observamos que en uno de los tubos de la etapa “C” hay
presencia de producto, demostrado por el precipitado color rojo, este producto
sólo se presenta si en la etapa “A” hay un enzima que actúe con su sustrato.
ANEXOS
Tubo IA y IIA
Tubo IB y IIB
Tubo IC y IIC
Bibliografía
http://www.ehu.eus/biomoleculas/enzimas/enz1.htm
https://sites.google.com/site/laboratoriosbioquimica/bioquimica-i/carbohidratos/reaccion-de-benedict
https://sites.google.com/site/laboratoriosbioquimica/bioquimica-i/prueba-del-almidon



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